摘要目的:探索细胞膜囊泡(cell membrane vesicles,CMVs)作为广泛适用的基因沉默工具小干扰RNA(small interfering RNA,siRNA)递送平台的可行性,并以脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)诱导的人牙髓干细胞(dental pulp stem cells,DPSCs)炎症模型验证其应用效果.方法:采用细胞松弛素B处理3T3细胞制备CMVs,并通过共聚焦显微镜、动态光散射检测CMVs理化性质.利用洋地黄皂苷透化CMVs将靶向肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)的siRNA(siTNF-α)负载至CMVs中,构建CMVs@siTNF-α.通过流式细胞术和共聚焦显微镜检测siRNA负载与胞内转运效率.以LPS(1 mg/L)刺激DPSCs建立炎症模型,并与CMVs或CMVs@siTNF-α共培养.采用细胞活力检测试剂盒(cell counting kit-8,CCK-8)检测细胞毒性,实时荧光定量聚合酶链反应(quantitative real-time polymerase chain reaction,qRT-PCR)和酶联免疫吸附试验(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)检测TNF-α、白介素(interleukin,IL)-1β和IL-6的表达与分泌.结果:CMVs呈球形,由细胞膜及细胞质构成,平均粒径为903 nm,表面电位为-9.39 mV.流式细胞术结果显示,负载荧光素酰胺(fluorescein amidite,FAM)标记siRNA(FAM-siRNA)后CMVs荧光强度升高;DPSCs加入CMVs@FAM-siTNF-α培养24 h后,荧光信号增强.CCK-8检测结果显示CMVs及CMVs@siTNF-α对DPSCs无明显毒性.LPS处理显著上调DPSCs中TNF-α、IL-1β和IL-6的表达,与LPS组相比,CMVs@siTNF-α下调TNF-α mRNA及其蛋白表达水平,并抑制IL-1β和IL-6的转录与分泌.单独CMVs处理无明显差异.结论:CMVs可作为一种低毒性的siRNA递送平台,在体外炎症模型中实现TNF-α沉默及下游炎症反应抑制,具有进一步研究和应用的潜力.