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Tim-3/HMGB1在细粒棘球蚴感染中的免疫作用研究

摘要目的:嚢型包虫病是一种非常严重的人畜共患寄生虫病。Tim-3可以抑制由T细胞介导的免疫反应并诱导产生免疫耐受。本课题研究Tim-3、HMGB1在活动性、非活动性CE患者中的表达差异,观察Tim-3、HMGB1在活动性CE患者治疗前后的变化特点,探讨Tim-3/HMGB1在细粒棘球蚴持续感染中的免疫作用。<br>  方法:1)采用流式细胞术(Flow Cytometry,FCM)检测活动性CE患者、非活动性CE患者、健康对照组三组外周血淋巴细胞中Tim-3+T细胞的表达量及Treg、Th17细胞的变化;2)采用实时荧光定量聚合酶链式反应(qRT-PCR)检测活动性CE患者、非活动性CE患者、健康对照组三组外周血单个核细胞(PBMC)中Tim-3、HMGB1、Foxp3、RORγt mRNA的表达情况;3)采用ELISA方法检测活动性CE患者、非活动性CE患者、健康对照组三组血清中Tim-3、HMGB1、TGF-β、IL-10、IL-6、IL-17的水平;4)采用FCM检测CE患者治疗前后、健康对照组三组外周血淋巴细胞中Tim-3+T细胞的表达量及Treg、Th17细胞的变化;5)采用qRT-PCR检测三组外周血单个核细胞(PBMC)中Tim-3、HMGB1、Foxp3、RORγt、TGF-β、Smad3、Smad7mRNA的表达情况;6)通过Person法分析细粒棘球蚴感染患者外周血淋巴细胞中Tim-3mRNA与HMGB1、Foxp3、RORγt、TGF-β、Smad3、Smad7mRNA的相关性;7)采用ELISA方法检测三组血清中Tim-3、HMGB1、TGF-β、IL-10、IL-6、IL-17的水平;8)通过Person法分析细粒棘球蚴感染患者血清中Tim-3与HMGB1、TGF-β、IL-10、IL-6、IL-17水平的相关性;结果:1)活动性CE患者Tim-3+T细胞、Treg细胞占CD4+T细胞的百分率分别为0.84±0.24%、3.01±0.42%,明显高于非活动性CE患者和健康对照组(P<0.05);活动性CE患者组外周血中Tim-3、HMGB1、Foxp3mRNA的表达水平分别为1.78±0.29、1.46±0.27、1.80±0.25,明显高于非活动性CE患者和健康对照组(P<0.05);活动性CE患者血清中Tim-3、HMGB1、TGF-β、IL-10的水平分别为55.59±8.69、36.98±7.75、343.54±53.8、55.26±8.58pg/mL,明显高于非活动性CE患者和健康对照组(P<0.05);2)CE患者治疗前Tim-3+T细胞、Treg细胞占CD4+T细胞的百分率分别为0.89±0.15%、3.24±0.95%,明显高于治疗后组和健康对照组(P<0.05);CE患者组外周血中Tim-3、HMGB1、Foxp3mRNA的表达水平分别为1.73±0.3、1.34±0.24、1.77±0.27,明显高于健康对照组(P<0.05),治疗后明显降低(P<0.05);CE患者治疗前外周血中TGF-β、Smad3的mRNA水平表达上调分别为2.65±0.28、2.07±0.25,显著高于治疗后组和健康对照组(P<0.05),而CE患者治疗前的Smad7mRNA水平明显低于治疗后组和健康对照组(P<0.05);CE患者治疗后血清中Tim-3、HMGB1、TGF-β、IL-10的水平均降低,分别为15.42±5.29、8.59±2.85、137.91±47.31、8.3±1.56pg/mL,明显低于治疗前的水平53.29±7.73、36.99±8.83、342.88±54.51、51.73±6.7pg/mL(P<0.05);3)Person分析结果显示,CE患者外周血中Tim-3mRNA的表达与HMGB1、Foxp3、Smad3mRNA的表达呈明显的正相关(P<0.05),而与Smad7mRNA的表达呈负相关(P<0.05);CE患者外周血中Tim-3mRNA与血清中HMGB1、Tim-3、IL-10水平呈正相关(P<0.05);CE患者血清中Tim-3水平与血清中HMGB1和IL-10的水平呈正相关(P<0.05)。<br>  结论:1)Tim-3、HMGB1在CE患者中表达增高,治疗后明显下降,表明其与CE的发生发展有关;2)活动性CE患者Treg细胞及TGF-β和IL-10明显增高,治疗后显著下降,相关分析发现Tim-3与HMGB1、Foxp3及IL-10的呈正相关,表明Eg感染过程中Tim-3/HMGB1与Treg细胞改变有关;3)活动性CE患者治疗前后TGF-β/Smads分子变化显著,表明该信号通路在Eg感染过程中持续激活,相关分析提示Tim-3与TGF-β/Smads通路激活有关。总之,Tim-3发挥免疫抑制作用与Treg细胞活化有关,可能借助TGF-β/Smads通路调控Treg分化,诱导负性调控机制,同时影响Treg和Th17细胞平衡,进一步促进Eg免疫逃避的产生。

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