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摘要DNA甲基化是表观遗传调控的重要组成部分，在基因表达、细胞功能维持、胚胎发育以及肿瘤发生等方面发挥着重要作用。N6-甲基腺嘌呤(6mA)是DNA甲基化修饰方式之一，由甲基转移酶N6AMT1和去甲基化酶ALKBH1调控。研究发现，肿瘤组织中6mA及其甲基转移酶N6AMT1的水平呈现下调，而去甲基化酶ALKBH1的水平呈现上调。到目前为止，有关N6AMT1基因研究的报道甚少，对其具体生物学功能的研究十分匮乏。<br>　　为进一步探究N6AMT1基因的功能，本研究首先鉴定了几个细胞系N6AMT1基因的表达水平，随后选择表达量较高的HEK293细胞系和表达量较低的Hela细胞系进行研究。利用CRISPR/Cas9基因编辑技术构建了N6AMT1基因敲降的HEK293细胞系，同时构建了过表达N6AMT1基因的Hela细胞系。分析比较了N6AMT1基因表达变化对细胞相关表型的影响，进而初步探讨了N6AMT1基因的生物学功能。研究结果如下:<br>　　1、不同细胞系的N6AMT1基因的表达水平测定。<br>　　研究旨在检测不同类型细胞系中N6AMT1基因的表达水平，探究不同类型细胞N6AMT1基因的表达差异，主要是肿瘤细胞的表达差异。已有的细胞系分为两大类，一类是人的正常组织细胞系HEK293和LO2，一类是肿瘤组织细胞系SMMC-7721、MCF7HepG2、BGC823、MDA-MB-231、MCF7、AGS、HCT116、KYSE-150和Hela。RT-qPCR鉴定结果显示:正常肾上皮组织细胞系HEK293中N6AMT1基因的表达水显著高于癌细胞的表达水平;正常肝细胞系LO2的N6AMT1基因的表达水平显著高于肝癌细胞系HepG2和SMMC-7721。在上述测定的细胞系中，HEK293细胞的N6AMT1基因的表达水平最高，而Hela细胞的表达水平相对较低，因此选择HEK293细胞进行N6AMT1基因敲降，选用Hela细胞进行过表达研究。<br>　　2、构建N6AMT1基因敲降的HEK293细胞系以及观察基因敲降对细胞表型的影响。<br>　　在N6AMT1基因第一个外显子上设计sgRNA，构建N6AMT1-sgRNA载体，筛选出基因编辑效率最高的sgRNA表达载体。之后，开始构建同源重组载体，在编辑区上下游各选择40bp序列作为同源臂，将其连接在筛选标签基因和转录终止序列BGH ploy(A)的两端。本实验采用了两种组合的筛选基因，一种是含有PuroR和NeoR的双抗性基因组合;另一种是含有PuroR和eGFP的抗性基因和荧光基因的组合。前者利用嘌呤霉素(Puromyein)和新霉素(Neomycin)筛选转染细胞，后者用嘌呤霉素(Puromycin)并结合荧光表达情况筛选细胞。在CRISPR/Cas9系统介导的同源重组下，将Donor序列插入N6AMT1基因的第一个外显子中，利用插入标签基因的表达对HEK293细胞进行筛选。最后从DNA、RNA以及蛋白水平鉴定N6AMT1基因的敲降情况。结果表明:N6AMT1基因被成功编辑，N6AMT1基因RNA和蛋白水平均有显著降低，最终确认获得了N6AMT1敲降的HEK293细胞系(命名为:HEK293-N6AMT1-Knowdown，HEK293-NK)。接着研究N6AMT1基因敲降对HEK293细胞表型的影响。分别在细胞周期、细胞增殖、细胞迁移以及细胞克隆形成这四个方面对HEK293-NK细胞进行检测。结果表明，N6AMT1基因敲降显著增强了HEK293细胞的增殖、迁移以及克隆形成能力。<br>　　3、N6AMT1基因过表达对Hela细胞表型的影响。<br>　　首先构建N6AMT1基因过表达载体pcDNA3.1-N6AMT1，再将过表达载体瞬时转染至Hela细胞中。RT-qPCR鉴定N6AMT1基因过表达后，对Hela细胞进行增殖实验和迁移实验。结果表明，Hela细胞过表达N6AMT1后，细胞的增殖和迁移均受到抑制。实验再次证明N6AMT1基因的确影响细胞的增殖和迁移能力。由此推测N6AMT1基因对肿瘤的发生和转移有一定的影响作用。