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miR--663调控SLE患者骨髓MSCs功能及机制研究

摘要背景:系统性红斑狼疮(systemiclupuserythematosus,SLE)为经典的自身免疫病原型,发病机制尚不清楚,目前仍缺乏安全有效的治疗方法。本课题组前期发现,SLE患者骨髓间充质干细胞(mesenchymalstemcells,MSCs)功能存在异常,可能参与其发病,机制尚不清楚。异基因MSCs移植(MSCstransplantation,MSCT)治疗SLE已被证实安全有效。MSCs功能受多种因素调节,近年研究发现微小RNAs(microRNAs,miRNAs)参与MSCs功能的调控。<br>  miRNAs为长约19-25碱基的非编码单链小RNA,通过与其靶基因mRNA的3''-非编码区(3''-untranlatedregions,3''-UTR)不完全互补配对,降解靶基因mRNA或抑制其翻译过程,从而参与细胞生长、发育等调控,其表达及功能失调与多种疾病的发生相关。目前尚无学者从miRNAs角度揭示SLE骨髓MSCs功能异常的机制。<br>  目的:本研究筛选了SLE患者骨髓MSCs异常表达的miRNAs种类,分析其与临床谱的相关性;体外探讨miR-663对骨髓MSCs功能的影响及调控机制,并通过狼疮鼠模型进一步探讨miR-663对骨髓MSCs功能及疗效的调控。<br>  方法:细胞贴壁法成功培养健康人及SLE患者骨髓MSCs,酶消化法收集第四代(passage4,P4)MSCs,流式细胞术(flowcytometry,FCM)鉴定培养骨髓MSCs表型及纯度,miRNAs表达谱芯片技术检测194种SLE相关成熟miRNAs在健康人及SLE患者骨髓MSCs中表达水平差异,应用分层聚类分析筛选SLE骨髓MSCs异常表达miRNAs种类,实时荧光定量聚合酶链反应(quantitativerealtimepolymerasechainreaction,qRT-PCR)验证芯片筛选miRNAs在SLE患者骨髓MSCs中的异常表达,分析其与临床谱的相关性。人工转染miR-663-negative-control(miR-663-C)、mimics-miR-663(miR-663-M)及inhibitor-miR-663(miR-663-I)真核细胞表达载体至健康入骨髓MSCs,以未转染骨髓MSCs为对照组(miR-663-N),分别测其增殖、迁移、凋亡及免疫调节等功能,具体为:CFSE法检测其增殖功能,trans-well体系检测其迁移功能,AnnexinⅤ/7-AAD双染色法检测其凋亡率,并将MSCs与外周血单个核细胞(peripheralbloodmononuclearcells,PBMCs)1∶10共培养3天后,FCM检测辅助性T细胞1(helperTcells1,Th1)、Th2、Th17、调节性T细胞(regulatoryTcells,Treg)及滤泡辅助T细胞(follicularTcells,Tfh)等免疫细胞比率,以测其免疫调节功能。生物信息学分析预测miR-663靶点,并对靶基因进行功能分析,发现转化生长因子-β1(transforminggrowthfactor-β1,TGF-β1)为其重要预测靶点,qRT-PCR法检测健康人和SLE患者骨髓MSCs中TGF-β1mRNA表达,酶联免疫吸附法(enzyme-linkedimmunosorbentassay,ELISA)检测血清及共培养上清中总TGF-β1及活化TGF-β1蛋白表达水平,人工干扰TGF-β1通路后,检测miR-663对骨髓MSCs功能影响。构建TGF-β1mRNA表达载体,通过双荧光素酶报告基因实验直接验证其靶点。蛋白免疫印迹法(westernblot,WB)检测miR-663相关载体转染后MSCs内信号通路蛋白分子(Smad2/3、Akt、p38/MAPK等)变化,阻断信号通路后,检测MSCs功能变化,以明确miR-663调控MSCs的具体信号通路。红色荧光燃料PKH26标记的miR-663-C、miR-663-M及miR-663-I真核细胞表达载体转染入骨髓MSCs并输注16周龄MRL/lpr小鼠体内,以PKH26标记骨髓MSCs治疗组为对照组,24h及72h后,检测MSCs体内归巢能力变化。分别转染有miR-663相关载体的骨髓MSCs尾静脉输注16周龄MRL/lpr小鼠,以未转染骨髓MSCs(non-transfection)治疗组及滑膜成纤维细胞(fibrolast-likesynoviocytes,FLS)治疗组为对照组,8周后,ELISA法检测外周血免疫球蛋白(immunoglobulin,IgG)、抗双链DNA抗体(anti-doublestrandedDNAantibody,Anti-ds-DNA)及抗核抗体(antinuclearantibody,ANA)水平,考马斯蓝染色(coomassiebluestaining,CBS)法检测尿蛋白浓度,苏木精-伊红染色(hematoxylin-eosinstaining,HE染色)观察肾脏病理,免疫荧光法检测IgG、补体3(complement3,C3)等免疫复合物在肾脏中沉积水平,FCM法检测小鼠脾脏单个核细胞(mononuclearcell,MCs)中Th1、Th17、Treg及Tfh等免疫细胞比率,并检测小鼠骨髓MSCs增殖、迁移等功能变化。<br>  结果:SLE患者骨髓MSCs中存在多种异常表达的miRNAs,其中异常高表达miRNAs:hsa-miR-27b_st,hsa-miR-374a_st,hsa-miR-638_st,hsa-miR-663_st,hsa-miR-502-3p_st,hsa-miR-214_st,hsa-miR-744-3p_st,hsa-miR-99b-star_st,hsa-miR-423-3p_st,hsa-miR-574-3p_st;异常低表达miRNAs:hsa-let-7a_st,hsa-let-7f_st,hsa-let-27b_st,hsa-miR-374a-star_st。miR-663表达与CRP、SLEDAI评分正相关,与C3负相关,但与C4、Cr、BUN无显著相关性,而miR-638表达与CRP、SLEDAI评分正相关。miR-663可降低健康人骨髓MSCs增殖、迁移率,增加其晚期凋亡率,且MSCs与PBMCs共培养时(1∶10),与miR-663-C组相比,miR-663-M转染组MSCs不能有效上调Treg百分率,且不能有效降低Tfh百分率,而miR-663-I组效果相反。进一步实验证实,这一过程可能通过降低CD4+CD25+T细胞增殖率,抑制CD4+CD25-T分化为Treg,促进na(i)veCD4+T细胞分化为Tfh发挥作用,而对Th1、Th2及Th17等免疫细胞无明显调节作用。相对于健康人,TGF-β1mRNA在SLE患者MSCs中低表达,且miR-663转染可逆转MSCs中TGF-β1mRNA表达及MSCs分泌TGF-β1水平。WB等研究提示,TGF-β1活化Akt、p38/MAPK信号通路介导了miR-663对MSCs迁移及免疫调节功能的影响。荧光素酶报告基因证实miR-663调控MSCs免疫调节等功能是通过直接靶向TGF-β1mRNA实现。与miR-663-C及miR-663-M组相比,miR-663-I转染可增强骨髓MSCs体内归巢能力,提高MSCs治疗MRL/lpr小鼠疗效,表现为脾脏及淋巴结显著变小,外周血总IgG及显著降低,ANA水平及蛋白尿浓度有下降趋势,肾脏病理及免疫复合物沉积有所改善,且MSCT可扭转MRL/lpr小鼠中TGF-β1异常表达水平,对MRL/lpr小鼠骨髓MSCs增殖及迁移功能也有一定修复作用。<br>  结论:SLE患者骨髓MSCs中存在多种异常表达的miRNAs,其中以miR-663异常表达最为显著,且miR-663水平与SLE患者临床谱显著相关。miR-663通过靶向TGF-β1影响SLE患者骨髓MSCs免疫调节等功能,这可能参与SLE发病,也可能是SLE患者自体骨髓MSCT疗效不佳的原因之一。抑制miR-663表达可增强骨髓MSCs体内归巢能力,提高MSCT对MRL/lpr小鼠疗效。

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